甲基化研究套路
今天运困体育就给我们广大朋友来聊聊广西甲基化分析,希望能帮助到您找到想要的答案。
DNA甲基化的内容、功能、检测及其研究方法
DNA甲基化(DNA methylation)
DNA甲基化是最早发现的修饰途径之一,大量研究表明,DNA甲基化能引起染色质结构、DNA构象、DNA稳定性及DNA与蛋白质相互作用方式的改变,从而控制基因表达。
在甲基转移酶的催化下,DNA的CG两个核苷酸的胞嘧啶被选择性地添加甲基,形成5-甲基胞嘧啶,这常见于基因的5'-CG-3'序列。大多数脊椎动物基因组DNA都有少量的甲基化胞嘧啶,主要集中在基因5’端的非编码区,并成簇存在。甲基化位点可随DNA的复制而遗传,因为DNA复制后,甲基化酶可将新合成的未甲基化的位点进行甲基化。DNA的甲基化可引起基因的失活。
DNA甲基化主要形成5-甲基胞嘧啶(5-mC)和少量的N6-甲基嘌呤(N6-mA)及7-甲基鸟嘌呤(7-mG)
结构基因含有很多CpG 结构, 2CpG 和2GPC 中两个胞嘧啶的5 位碳原子通常被甲基化, 且两个甲基集团在DNA 双链大沟中呈特定三维结构。基因组中60%~ 90% 的CpG 都被甲基化, 未甲基化的CpG 成簇地组成CpG 岛, 位于结构基因启动子的核心序列和转录起始点。有实验证明超甲基化阻遏转录的进行。DNA 甲基化可引起基因组中相应区域染色质结构变化, 使DNA 失去核酶ö限制性内切酶的切割位点, 以及DNA 酶的敏感位点, 使染色质高度螺旋化, 凝缩成团, 失去转录活性。5 位C 甲基化的胞嘧啶脱氨基生成胸腺嘧啶, 由此可能导致基因置换突变, 发生碱基错配: T2G, 如果在细胞分裂过程中不被纠正,就会诱发遗传病或癌症, 而且, 生物体甲基化的方式是稳定的, 可遗传的。
DNA 甲基转移酶有两种: 1) DNM T1, 持续性DNA 甲基转移酶—— 作用于仅有一条链甲基化的DNA 双链, 使其完全甲基化, 可参与DNA 复制双链中的新合成链的甲基化,DNM T1 可能直接与HDAC (组蛋白去乙酰基转移酶) 联合作用阻断转录; 2)DNM T3a、DNM T3b从头甲基转移酶, 它们可甲基化CpG, 使其半甲基化, 继而全甲基化。从头甲基转移酶可能参与细胞生长分化调控, 其中DNM T3b在肿瘤基因甲基化中起重要作用。
DNA 去甲基化有两种方式: 1) 被动途径: 由于核因子N F 粘附甲基化的DNA , 使粘附点附近的DNA不能被完全甲基化, 从而阻断DNM T1 的作用; 2) 主动途径: 是由去甲基酶的作用, 将甲基集团移去的过程。在DNA 甲基化阻遏基因表达的过程中, 甲基化CpG 粘附蛋白起着重要作用。虽然甲基化DNA 可直接作用于甲基化敏感转录因子E2F、CREB、A P2、CM ycöM yn、N F2KB、Cmyb、Ets, 使它们失去结合DNA 的功能从而阻断转录, 但是, 甲基化CpG 粘附分子可作用于甲基化非敏感转录因子(SP1、CTF、YY1) , 使它们失活, 从而阻断转录。人们已发现5 种带有恒定的甲基化DNA 结合域(MBD ) 的甲基化CpG 粘附蛋白。其中M ECP2、MBD1、
MBD2、MBD3 参与甲基化有关的转录阻遏;MBD1 有糖基转移酶活性, 可将T 从错配碱基对TöG 中移去,MBD4 基因的突变还与线粒体不稳定的肿瘤发生有关。在MBD2 缺陷的小鼠细胞中, 不含M ECP1 复合物, 不能有效阻止甲基化基因的表达。这表明甲基化CpG 粘附蛋白在DNA 甲基化方式的选择, 以及DNA 甲基化与组蛋白去乙酰化、染色质重组相互联系中的有重要作用。
甲基化套路
和甲基化有关的。
可以先了解下甲基化:
450k甲基化基础
450K甲基化芯片数据处理传送门
450k甲基化芯片常用工具包:ChAMP和minfi等。
甲基化的一些预备知识
甲基化程度的量化
DMP(或DML,差异甲基化位点)与 DMR(差异甲基化区域)的关系。如何定义DMR?
一般来说,DMR是通过统计bump来计算出来的,可以参考: ChAMP 分析甲基化芯片数据-差异分析下篇
一般来说,我们还会关注两个方面的信息:DMR与CpG岛的关系,DMR与基因的关系。
DMR与CpG岛的关系:图片来自 ShengXinRen
关于DMR或DMP与基因的关系(笔者特别关注甲基化位点的功能注释),简要总结如下。
一般而言,启动子区域的甲基化程度影响基因的转录(但也有报道说第一外显子等位置的甲基化也与基因的转录相关)。如何描述一个基因的转录相关的甲基化程度呢?
有个论坛上是这么说的( ShengXinRen ):
也有人总结如下:
以及这种说法( ):
另外,补充一个知识( “启动子预测”技能 ):
感觉暂时并没有统一的标准。
可以自己尝试各种界定标准:
1、 TSS上游1500bp、2000bp、5000bp内的甲基化位点的平均值;
2、 TSS上游及下游1500bp、2000bp、5000bp内的甲基化位点的平均值;
3、 TSS上游1500bp、2000bp、5000bp内或5-UTR或第一外显子的甲基化位点平均值。
考虑5000是因为CpG岛的加上两边的Shore一般可达到6kb左右。注意到,5-UTR是第一外显子的一部分。有时候甚至还可以加上是否为CpG岛(或Shore)这个限定。
下图来自: 彻底搞清楚promoter, exon, intron, and UTR
3.4分,简单的肠癌甲基化分析。主要涉及差异分析、关联分析、功能注释。
解读: 如何从甲基化入手,轻松整篇预后标志物的文章
1、 数据质控 :共485,577个基因座的DNA甲基化数据,在预处理数据和质量控制后,保留了467,971个探针。
2、 差异筛选 :minfi包筛选DMR(差异化甲基化区域),这一步类似于RNA-Seq的筛选差异基因。结果:最终得到675个差异甲基化区域,其中654个上调。
3、 注释和功能
3-1 DMR的注释 :这些DMR区域与基因的关系是什么呢?我们利用这些差异甲基化区域的位置与基因的各个元件位置的关系,观察这些差异甲基化区域主要分布在基因的哪些位置上。结果:上调的甲基化区域大多数位于基因的第一外显子,5'UTR,TSS200,TSS150和基因体中,而只有少数UMR位于基因间和3'UTR中区域,同样的下调的甲基化区域也有相同的现象。
3-2 DMR与CpG岛的关系 :差异甲基化区域与CpG岛的关系如图,从中可以看出上调的差异甲基化区域主要聚集在CpG岛区域,而下调的差异甲基化区域主要聚集在低CpG岛密度区域。
总结:
在本研究中,在大量COAD样品中进行了DNA甲基化谱的综合分析,以研究COAD中存在的改变的DNA甲基化模式。COAD样品和邻近组织样品之间的DNA甲基化谱的比较揭示了COAD样品中异常的DNA甲基化变化,并导致675个DMR的鉴定,包括654个高甲基化和21个低甲基化DMR。这些结果与先前的研究结果一致,即DNA高甲基化是结直肠癌的常见特征。
此外,这些DMR可用于有效区分COAD样品和相邻组织样品,这表明DMR可能在COAD的形成中具有致病作用。基因组分析显示,DMR主要位于启动子区域(包括第1 外显子,5'UTR和TSS)和体区,这与之前在其他类型癌症中的观察结果一致。在基因间和 3'UTR 区域中仅发现了一小部分DMR。此外,大多数高甲基化DMR位于CpG岛中,而大多数低甲基化DMR不位于CpG岛或注释基因中。
基因甲基化检测、甲基化PCR 的原理是什么
一种全新的DNA甲基化研究方法——Pyrosequencing技术
DNA甲基化是一种表观遗传修饰,它是由DNA甲基转移酶(DNA methyl-transferase, Dnmt)催化S-腺苷甲硫氨酸作为甲基供体,将胞嘧啶转变为5-甲基胞嘧啶(mC)的一种反应,在真核生物DNA中,5-甲基胞嘧啶是唯一存在的化学性修饰碱基。CG二核苷酸是最主要的甲基化位点,它在基因组中呈不均匀分布,存在高甲基化、低甲基化和非甲基化的区域,在哺乳动物中mC约占C总量的2-7%。一般说来,DNA的甲基化会抑制基因的表达。DNA的甲基化对维持染色体的结构、X染色体的失活、基因印记和肿瘤的发生发展都起重要的作用。
CpG双核苷酸在人类基因组中的分布很不均一,而在基因组的某些区段,CpG保持或高于正常概率,这些区段被称作CpG岛。CpG岛主要位于基因的启动子和第一外显子区域,约有60%基因的启动子含有CpG岛。 CpG甲基化的研究在肿瘤的研究中有着非常主要的地位。通过基因启动子区及附近区域CpG岛胞嘧啶的甲基化可以在转录水平调节基因的表达,从而引起相应基因沉默,去甲基化又可恢复其表达。DNA甲基化在生理情况下就参与了控制基因的时空表达,在肿瘤发生时,肿瘤细胞全基因组低甲基化是一个重要特征。肿瘤细胞基因组甲基化的程度与正常细胞相比仅为20-60% , 同时伴有局部区域基因的高甲基化,包括肿瘤抑制基因、抑制肿瘤转移和浸润的基因、细胞周期调节基因、DNA修复基因、血管形成抑制基因等。但是目前研究手段的局限,限制了DNA甲基化的广泛研究。
近年来,研究者不断探索定性及定量检测单个或多个甲基化位点的方法,但由于甲基化多态性区域存在的密度很高,所以对于延伸反应其引物的位置很难设计。Pyrosequencing技术作为一种新的序列分析技术,能够快速地检测甲基化的频率,对样品中的甲基化位点进行定性及定量检测,为甲基化研究提供了新的途径。
从原理上来看,Pyrosequencing是一种通过合成方法进行序列分析的方法,它通过核苷酸和模板结合后释放的焦磷酸引发酶级联反应,促使荧光素发光并进行检测。这项技术曾经被用作单核苷酸多态性(SNP)的基因型和单倍型的检测,以及细菌和病毒的鉴定和分型研究。这项技术的一个主要特点是在Pyrogarm™软件上显示的峰值高度来自于序列分析的原始数据,通过峰值的高度可以精确的检测混合DNA模板中等位基因的频率。
目前甲基化研究方面,很多甲基化定量分析的报道采用亚硫酸氢盐处理甲基化样本,并用混合的PCR产物
作为校正。其主要原理是:亚硫酸氢盐可以将没有甲基化的胞嘧啶转化为尿嘧啶,而在适当的实验条件下甲基化的胞嘧啶保持不变。因而,用它处理样本后,再进行PCR扩增,甲基化的位点可以被当作一个C/T的SNP来处理,它的基因频率为0-100%。在此,我们给大家介绍一个研究人员使用Pyrosequencing技术分析并精确定量DNA甲基化水平的例子。
研究者在一个Pyrosequencing反应中同时检测了6个甲基化位点。这种方法同样可以用于石蜡包埋的组织,并且具有较高的重复性和精确性。实验选择谷胱甘肽-S-转移酶π(GSTP1)转录启动位点的CpG岛进行检测。这些位点在正常前列腺组织中是非甲基化的,而在肿瘤样本中高甲基化。通过PCR扩增一个包含17个甲基化多态位点140bp的片段,并用4个测序引物研究其中15个位点(Table 1)。使用在线的SNP测序引物设计软件(Pyrosequencing AB)设计测序引物,其中一些甲基化多态性位点用最可能的碱基所代替,以减少计算的数量。再通过人工检测测序引物可能存在的错配。此外,同时在PSQ 96MA DNA分析仪上运行空白对照,扣除由测序引物、生物素标记的引物或是模板引起的背景。
PCR引物设计完全与模板相匹配,不覆盖任何甲基化多态性区域。使用10ng亚硫酸氢盐转化的DNA样本或是10 fmol纯化的PCR产物,10 pmol 正向(5’-GTGATTTAGTATTGG-3’)和反向(5’-biotin-AACTCTAAACCCCATC-3’)引物扩增GSTP1转录启动位点的基因片段,扩增片段长度为144bp。反应体系为60 mM Tris-SO4, pH 8.9, 18 mM (NH4)2SO4, 1 mM MgSO4, 200 μM dNTPs,以及3 U Platinum Taq DNA高保真聚合酶,终体积为50μL。PCR循环设置:首先在95℃下变性4分钟,然后在95℃ 30S,50℃ 45S以及72℃ 20S条件下重复50个循环,最后一步延伸步骤在72℃下4分钟,中止反应。PCR反应在Eppendorf的Mastercycler 96
哺乳动物基因组中,DNA甲基化是指CpG二核苷酸中的胞嘧啶第5位碳原子被甲基化. DNA甲基化是一种基因外修饰,不改变DNA的一级结构; 他在细胞正常发育、基因表达模式以及基因组稳定性中起着至关重要的作用. 全基因组低甲基化,维持甲基化模式酶的调节失控和正常非甲基化CpG岛的高甲基化是人类肿瘤中普遍存在的现象. DNA高甲基化是导致抑癌基因失活的又一个机制.
纯生信分析套路 综述|癌症中m6A与非编码RNA之间相互作用新见解
说起国自然研究新宠儿 “m6A甲基化修饰” ,想必大家都不陌生,m6A甲基化是包括mRNA和ncRNA(即非编码RNA,包括miRNA,rRNA,circRNA和lncRNA等)在内的所有RNA最普遍的表观遗传修饰。越来越多的证据表明,m6A甲基化修饰在各种生理和病理过程中都起着至关重要的作用。今天就向大家分享一篇发表在Molecular Cancer(IF:15.302)杂志上的关于m6A与ncRNA在癌症中相互作用的综述文章。
Part 1.初识m6A甲基化真面目
m6A,又称N6-甲基腺苷,指腺嘌呤的第6位氮原子(N)发生了甲基化修饰,通过甲基化酶复合物对甲基进行“书写”(Writer)、“擦除”(Eraser)或“阅读”(Reader),进而对RNA发挥调控作用。
m6A甲基化的分子组成 —甲基化酶复合物
1) 甲基化转移酶(methyltransferase):被称为“编码器”(Writer),主要包括METTL3、METTL14、WTAP、KIAA1429、METL16、RBM15 / 15B等;
2) 去甲基化酶(demethylase):被称为“消码器”(Eraser),主要包括FTO、ALKBH5等;
3) m6A识别因子(recognition factors): 被称为“读码器”(Reader),主要包括YTHDC1/2、YTHDF1/2/3、HNRNP、eIF3、IGF2BP1 / 2/3等。
图1.m6A甲基化修饰示意图:m6A甲基化是一个动态可逆的过程,由“Writer”、“Eraser”、“Reader”三者共同完成。
Part 2.m6A甲基化修饰miRNA
miRNA的失调参与多种生物学行为,如小鼠胎儿发育,免疫应答,炎症反应和致癌等,研究表明,m6A甲基化可以修饰参与多种miRNA的成熟,参与该过程的主要是甲基化转移酶METTL3和METTL14等:
① METTL3促进miR-25-3p成熟,miR-25-3p在胰腺导管腺癌(PDAC)中起关键作用;
② METTL3增强pri-miR-221 / 222与DGCR8的结合,而DGCR8参与了膀胱癌的增殖;
③ METTL3促进pri-miR-1246的成熟从而促进结直肠癌(CRC)的转移;
④ METTL3加速miR-143-3p的成熟,导致METTL3 / miR-143-3p / vasohibin-1轴的形成,有利于肺癌的转移;
⑤ METTL3通过修饰多个miRNA(miR-106b,miR-18a / b,miR-3607,miR-423,miR-30a,miR-320b/d /e)影响砷诱导的癌变;
⑥ METTL14促进pri-miR-126的成熟,从而可以抑制肝癌(HCC)的侵袭和转移。
图2. m6A甲基化修饰miRNA:调节胰腺导管腺癌,肺癌,肝癌,膀胱癌和结直肠癌等癌症的发生和转移
Part 3.m6A甲基化修饰lncRNA
lncRNA一般指长度大于 200 个核苷酸的非编码 RNA,可在癌症中被m6A甲基化修饰,参与该过程的主要是甲基化转移酶METTL3、METTL14,去甲基化酶ALKBH5,m6A识别因子YTHDF1、IGF2BP2等:
① MALAT1是首个被发现与肺癌相关的lncRNA,METTL3可以调节MALAT1-miR-1914-3p-YAP轴来诱导非小细胞肺癌的耐药和转移,还可以通过MALAT1/miR-145/FAK途径加重梗阻性肾病的肾纤维化;
② METTL3上调LINC00958,并使miR-3619-5p海绵化而促进HCC细胞的迁移和侵袭;
③ METTL3家族成员FAM225A充当海绵miR-590-3p / miR-1275的ceRNA和上调ITGB3来促进鼻咽癌(NPC)的发生和转移;
④ METTL3/14通过上调DKK1的lncRNA激活调节剂(LNCAROD)来增强头颈部鳞状细胞癌(HNSCC)的迁移;
⑤ METTL3介导lncRNA RP11通过Zeb1的上调增强CRC迁移和侵袭,而
METTL14增加lncRNA XIST的m6A水平,抑制CRC的增殖和转移;
⑥ ALKBH5通过维持FOXM1表达和细胞增殖程序来维持胶质母细胞瘤类干细胞(GSCs)的致瘤性,lncRNA FOXM1-AS可促进ALKBH5与FOXM1之间的相互作用;
⑦ ALKBH5通过减少lncRNA NEAT1的甲基化来促进胃癌(GC)的侵袭和转移。
⑧ YTHDF1与LINC00278相互作用可抑制食管鳞状细胞癌(ESCC)转移,而ALKBH5则促进ESCC转移;
⑨ IGF2BP2作为m6A读取器调节LncRNA DANCR,有利于胰腺癌的致癌性。
图3. m6A甲基化修饰lncRNA:参与多种癌症的肿瘤发生和转移,包括GSC,HNSCC,NPC,ESCC,肺癌,GC,HCC,胰腺癌和CRC
Part 4. m6A甲基化修饰circRNA
circRNA一般指环状RNA。环状RNA(circRNA)是一类特殊的非编码RNA分子(在活体中有时也有表达),也是RNA领域最新的研究热点。
circRNA在蛋白质翻译中起着至关重要的作用: METTL3和YTHDC1与环状RNA锌指蛋白609(circ-ZNF609)的代谢有关,并促进其生成,circ-ZNF609促进蛋白翻译和成肌细胞增殖;核糖体-circRNAs的“迷你基因”可以促进果蝇头部的蛋白翻译;
m6A甲基化会影响cricRNAs的蛋白质翻译: m6A基序在circRNA中富集,单个m6A位点被认为是启动circRNA翻译的触发器。m6A调控因子METTL3/14、FTO、YTHDF3和起始因子eIF4G2参与了m6A驱动的蛋白翻译。哺乳动物细胞可以识别circRNAs上的m6A修饰,通过抑制免疫基因激活和佐剂活性来抑制先天免疫。
circRNA的失调与多种癌症进展相关: circNSUN2的m6A甲基化修饰可促进细胞质输出并稳定HMGA2,从而促进结直肠肝转移;circPVRL3的m6A甲基化修饰可促进胃癌细胞的增殖和迁移。
表1:m6A甲基化修饰癌症中的ncRNA
Part 5. ncRNA调节癌症中的m6A甲基化
非编码RNA(ncRNA)具有影响涉及多个生物学过程m6A水平的能力。
miRNA调节癌症中的m 6 A甲基化:
① miR-33a通过靶向METTL3 mRNA抑制NSCLC细胞的增殖;
② miR-600抑制METTL3的表达并逆转了METTL3对NSCLC进展的积极作用;
③ miRNA let-7g通过靶向3'UTR下调METTL3表达,加速乳腺癌细胞的增殖;
④ miR-1266通过直接靶向FTO促进CRC的发生和发展;
⑤ miR-145通过靶向YTHDF2来抑制HCC的增殖;
⑥ miR-488是一种通过靶向eIF3a发挥作用的抑癌miRNA,还参与NSCLC细胞中eIF3a介导的顺铂耐药性;
⑦ miR-141通过形成miR-141 / IGF2BP2 / P13K / Akt轴来抑制胰腺癌的增殖。
lncRNAs调节癌症中的m 6 A甲基 化 :
① lncRNA LINC00470与METTL3相互作用促进PTEN mRNA降解,从而促进GC进程;
② lncRNA miR503HG通过调节肝细胞癌中的HNRNPA2B1 /NF-κB途径来抑制肿瘤转移;
③ lncRNA LINC01234与HNRNPA2B1相互作用,促进NSCLC中的细胞增殖并抑制细胞凋亡;
④ lncRNA LIN28B-AS1与IGF2BP1相互作用,促进肺腺癌(LUAD)的增殖和转移;
⑤ lncRNA LINRIS可稳定IGF2BP2并促进CRC增殖;
⑥ lncRNA GAS5-AS1与ALKBH5相互作用调节GAS5的表达抑制子宫颈癌(CC)细胞的增殖,迁移和侵袭;
⑦ lncRNA GAS5可以抑制YAP介导的YTHDF3,从而抑制CRC的增殖;
⑧ lncRNA GATA3-AS增强KIAA1429和GATA3 pre-mRNA之间的相互作用,促进肝癌的进展。
表2:ncRNA调节癌症中的m6A甲基化
Part 6. m6A甲基化在癌症中的临床应用
m6A甲基化是癌症诊断和预后的新生物标记
① METTL3,YTHDC2和HNRNPC用于预测HNSCC患者的预后;
② METTL3/FTO上调或YTHDF2和METTL14下调可能预示GC、CRC和HCC的生存率较差;
③ METTL14低表达与肿瘤分化、临床分期、微血管浸润有关;
④ ALKBH5或FTO下调预示肺癌和HCC预后不佳;
⑤ IGF2BP2被认为是胰腺癌,食管胃交界腺癌和CRC的预后标记物。
m6A甲基化参与耐药性和癌症治疗
① METTL3稳定YAP和ARHGAP5,诱导NSCLC和胃癌顺铂耐药;
② HNRNPA2B1在他莫昔芬耐药乳腺癌中过表达,降低他莫昔芬的敏感性;
③ METTL3、METTL14、FTO、YTHDF2在急性髓性白血病(AML)中过表达,FTO抑制剂(FB23)及其衍生物(FB23-2)通过靶向FTO促进AML中的髓样分化和凋亡;
④ m6A甲基化参与胃癌的肿瘤微环境和TME浸润特征评估;
⑤ YTHDF2与炎症浸润,血管重建和远处转移相关,并预示肝癌的不良预后。
生信人往期也有很多有关m6A的好文章可学习:
m6A+免疫浸润
m6A+突变思路
m6A调节因子泛癌分析
结语
越来越多的研究关注于m6A甲基化如何改变ncRNA的稳定性、剪接和翻译,或ncRNA如何在癌症中调控m6A。m6A甲基化与ncRNA的相互作用可影响肿瘤细胞增殖、侵袭和转移等不同的生命活动。就m6A甲基化的临床应用而言,可作为癌症诊断、预后和治疗的潜在靶点。然而,m6A甲基化与ncRNA之间的特异性结合位点还需要进一步研究。
无论是对于正在为写标书申基金发愁的老师们,还是正在为毕业课题发愁的研究生们来说,相信这篇综述都能够帮助你更好的理解m6A甲基化与ncRNA之间的相互作用,为你的课题添光加彩,感兴趣的小伙伴们赶快阅读起来吧!
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